Sisu
Kasvusööde, mida tuntakse ka kultiveerimiskeskkonnana, on vedel või želatiinne tahkestunud või milles mikrobioloogid arendavad mikroorganisme.Mikroorganismide kindlakstegemisel tekkis suur läbimurre siis, kui Robert Koch ja tema kolleegid töötasid välja meetodid, mis on vajalikud üksikute bakteriliikide arendamiseks ja isoleerimiseks tahke söötme abil. Kuigi see leiutis ja selle paljud eelised on muutnud mikrobioloogia valdkonda, on mõned puudused.
Kuna tahked kandjaplaadid on madalad ja neil on suured pindalad, dehüdreeruvad mikroorganismid kiiresti (Fotod.com/Photos.com/Getty Images)
Koostis
Mikroorganismide, näiteks bakterite kasvuks on vaja pakkuda neile looduslikes elupaikades sarnaseid keskkonna- ja toitumisalaseid tingimusi. Kultuurikeskkond peab tagama kõik kasvuks vajalikud toitumisvajadused, kaasa arvatud vesi, süsiniku- ja energiaallikas, lämmastikuallikas, mikroelemendid ja kasvufaktorid. Tavalise söötme koostisosadeks on vesi, agar, lihaekstrakt, pärmiekstrakt, linnaseekstrakt, peptoon ja hüdrolüüsitud kaseiin.
Järjepidevus
Kultuurisöötmed liigitatakse mitmel viisil, millest üks on konsistents. Vedelik, mida tavaliselt nimetatakse puljongiteks, on saadaval pudelites, kolbides ja katseklaasides. Tahke söötmeks on vedelik, milles on lisatud tahkisainet, tavaliselt agarit. Agar koosneb seotud suhkrumolekulidest, mida nimetatakse polüsahhariidideks, ja mis on saadud mõnedest punase vetikate liikidest. See sulab temperatuuril 100 ° C ja tahkestub umbes 43 ° C juures. Tahket söödet kasutatakse kaldus torude või torude kujul. Plaadid on lamedad, silindrilised mahutid mahutitega, mida nimetatakse petri tassideks, mis sisaldavad tahket kandjat. Kalduvad vahendid valmistatakse sula keskkonda paigutades torudesse ja jahutades need nurga all, mis tekitab pika ja kaldus kasvupinna. 1,5% agari kontsentratsioon on tüüpiline plaatidele ja kallutatud kandjatele.
Eelised
Tahke meedia on kasulik, kui on tõenäoline, et proov sisaldab bakterite segapopulatsiooni. Kui naastud on korralikult inokuleeritud, kasvavad bakterid eraldiseisvate kolooniat moodustavate üksustena. See võimaldab eeldatavat identifitseerimist, mis põhineb bakterikoloonia välimusel ja võimaldab valmistada puhtaid subkultuure. Varajane esialgne tuvastamine aitab arstidel õigeaegselt ravi valikuid teha. Puhtad subkultuurid võimaldavad bakterite täpset identifitseerimist ja antimikroobse tundlikkuse testimist. Bakteriaalsed saasteained on samuti tahkes keskkonnas kergesti nähtavad.
Puudused
Mikroorganismidel on erinevad hapniku vajadused. Aeroobsed organismid vajavad hapnikku, samas kui anaeroobid elavad ainult nende puudumisel. Erinevalt vedelast keskkonnast ei toeta tahkes keskkonnas aeroobsete ja anaeroobsete bakterite samaaegset kasvu. Järelikult tuleks duplikaatide inokuleerimine ja inkubeerimine mõlemas atmosfääris. Tahke söötmega ei saa mahutada suuri inokulaadi koguseid, tavaliselt neid, mis on suuremad kui 0,05 ml. Kuna kultiveerimiskeskkonna plaadid on madalad ja neil on suured pindalad, võivad nad kiiresti kuivada ja kaotada võime toetada kasvu mõne päeva jooksul, kui ei võeta aurustumise vältimise meetmeid.